重庆3K超滤离心管工厂

超滤作为一种膜分离技术，普遍应用于生物样品的浓缩、脱盐和缓冲液置换，其原理是样本在力的作用下，通过超滤膜孔径的筛滤，大分子量的颗粒被截留下来，而水、溶剂和低分子量溶质则允许透过膜，从而达到浓缩、脱盐和缓冲液置换的目的，这种方法较大的特点是操作简便、快速、高效，可同时浓缩和纯化分子，一般来说超滤的回收率能够达到90％以上，因此得到许多人的青睐。一种超滤离心管，包括主管，主管为顶部开口底部封闭结构，主管开口处安装有顶盖，主管内安装有内管，内管上下贯通，内管底面贴合有超滤膜，超滤膜将内管底面包覆，超滤膜底面贴合有支撑板，超滤膜位于内管底面与支撑板之间，内管底部安装有底托，内管配合底托将超滤膜、支撑板压紧，内管、超滤膜、支撑板、底托与主管中位于底托以下的容腔空间连通。超滤离心管利用超滤膜的过滤作用将目标物质从混合物中分离出来。重庆3K超滤离心管工厂

超滤离心管使用注意事项：当浓缩到剩下1ml时，取50ul缓冲溶液，加入10ul流穿，看有没变蓝色，以此判断超滤管是否漏掉蛋白。如果管漏了，将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。要精确判断是否漏管，用5mgml的BSA离心10min，再取流穿，跑蛋白胶或Bradford粗测，继续加入剩下的蛋白液浓缩（在冰上操作，防止蛋白受热），直到所有浓缩液都加完为止。离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的缓冲溶液，直到蛋白不发生沉淀为止。成都10K超滤离心管厂商超滤离心管可以用于制备高纯度的细胞培养基，以进行细胞培养和生长实验。

A（聚酰胺）:这种材质是PP和PE材质的聚合物，半透明，化学性质非常稳定，单不耐高温。PF（聚氟）:半透明，可以低温使用，如果是-100℃-140℃下的实验环境，就可以用这种材质的离心管。CAB（醋酸丁酯纤维素）:透明，可用于较稀的酸、碱、盐，以及酒精、蔗糖的梯度测定。PS（聚苯乙烯）:透明，硬度大，对大多数的水溶液稳定，但是会被多种有机物腐蚀，多用于低速离心，而且一般是一次性使用。离心管分类:按材质可分:塑料离心管、玻璃离心管和不锈钢离心管等。按速度可分:低速离心管和高速离心管。按容量可分:微量离心管、小容量离心管和大容量离心管。一般称容量大于100mL的离心管为离心瓶。

超滤离心管的分子量选择：按照样品量和目标分子量选择适当的超滤离心管，为了得到较高的收率，所选滤膜的截留分子量MWCO建议选择所需截留分子大小的1/3左右，不超过目标分子量的一半。因为超滤膜上孔径是平均孔径，膜上的孔并非均匀，离心高压下也可能渗漏，因此截留孔径越小，流速越慢但截留比例更大。如果样本浓度低体积大，可选择较小容积的超滤管多次重复加样离心。如果同时需要脱盐和去除可溶小分子杂质，可将待浓缩样品稀释到超滤管较大容积再离心，重复2次可除去99%盐。避免过长时间或者过速离心，虽然优良品质的产品都有防死端设计，可避免过度离心造成膜表面干而造成不可逆吸附。避免过度浓缩，体积越小，越容易因表面吸附而损失得率。离心后用Tips轻轻吹吸几次滤膜截留的溶液，必要时补加一定体积的缓冲液冲洗膜表面，有助于减少膜表面吸附，能提高回收率。尽量避免Tips接触膜表面。超滤离心管通常具有不同材质的选择，以适应不同化学环境下的使用需求。

超滤离心管，备有四种材质的超滤膜：聚醚砜、三醋酸纤维素、再生纤维素和Hydrosart，可根据不同要求灵活选用；两种回收浓缩液的方法：既可用吸管直接吸取并回收，又可将离心管放入离心机反甩，将浓缩液甩入回收帽中，加盖保存。这两种方法都可使浓缩液达到近乎完全回收；截留分子量普遍，配有3K、5K、10k、30K、50K、100K、300K、1000K、0.2μl的聚醚砜膜；新推出产品膜2K型，具有极低的蛋白吸附特性，高流速、高通量，是免疫球蛋白浓缩和脱盐的理想用膜。用以浓缩蛋白，如果要换Buffer，在总蛋白液浓缩至1ml左右的时候，轻轻加入新的Buffer（经0.22um超滤膜超滤），再 浓缩至1ml左右，连续三次，之后一次的浓缩终体积根据需要的蛋白浓度而定，一般不多于500ul，也有浓缩至200ul以内的情况。按照每次至少10倍左右的体积浓缩算，三次达到1000倍以上，基本上可以达到换buffer的目的。超滤离心管可以去除混合物中的低分子量化合物，提高目标化合物的纯度。北京10K超滤离心管工厂

使用超滤离心管时应注意遵循正确的温度、时间和压力要求，以获得较佳结果。重庆3K超滤离心管工厂

超滤离心管从细胞培养上清液中浓缩蛋白，在园子里找到一些关于浓缩蛋白的一些帖子，但还有些问题还是向园子里的大虾请教一下。我们定的是 15ml规格的管子，不知道有没有谁以前做过的，有关于转速，时间给一些建议，另外细胞上清液离心前是否需要什么预处理？离心之后回收蛋白时怎么尽量减少损失？如果要把管子重复利用，NaoH清洗后，如何在20%的乙醇中保存？是将其浸到乙醇中防于4度，还是在管子中灌入乙醇？我用过5ml的管子，当时使用的转速是4000rpm 8min，可以把5ml的样品液浓缩到约200ul，这只供参考，具体情况还要由您的样品决定。我保存5ml管子的方法是把内管取出，浸泡于装有20％乙醇的烧杯中。四度保存。重庆3K超滤离心管工厂