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磷酸化蛋白的WB第三方检测在实操过程中有哪些注意事项?研究完某一蛋白的磷酸化情况后比较好也要研究一下该蛋白总的表达量。如压完 phospho-p38 抗体后,我会把相同的 membrane 做 strip 后再压 p38, 然后再 strip 一次,再压内标 actin 。做磷酸化蛋白 WB 时,除了目标蛋白的 band 以外,往往会出现非特异性的 band. 磷酸化抗体不好的话,甚至会压出非特异性的 band, 而没有你想要的 band, 所以压片以后,一定要根据 markers 比对一下,压出的 band 分子量是否正确。 磷酸化蛋白 WB 时 backgroud 也往往较深,所以压片时间要适当,不能太长或过短,太长则 backgroud 太深盖住想要的那条 band, 时间过短则可能没有 band 或者 band 太浅。磷酸化蛋白 WB 时,要用TBST,不能用PBST。用 TBST 洗时也要注意一下,摇床的转速不要太快,洗的时间不要太长,孵育一抗和二抗之后分别洗 5min 3 次即可,宁愿 background 深一些,总比做不出来强得多 . 另外,洗的时候,比较好不要把几张 membrane 叠在一起洗。
磷酸化蛋白的WB第三方检测有哪些方法呢?50 度水浴 30min 后,用 TBST 洗 5 分钟 ,3 次即可去除已孵育结合的抗体。许多人会建议 55 度水浴 30min。Strip solution 是用来去除已结合的抗体,但也会去除部分的蛋白,导致蛋白信号变弱。我本人经实验发现水浴时有时温度不稳定,温度定为 55 度时往往其温度容易超过,导致较多的蛋白也被去除,故建议温度设为 50 度 30min ,既能有效去除已结合的抗体,又比 55 度更能保护蛋白。Strip 时一定要注意: membrane 一定要完全泡在 strip solution 中(可用较硬的塑料膜封好),然后要完全浸入水中,使受热均匀 。这一点很重要,要不然,随后压出来的总蛋白也好,内标也好就会不均一,无法进行比较。我曾将同一张membrane 用我提供的方法 strip 了 3 次,分别压不同的抗体(因为有时候蛋白分子量很接近),效果都不错。瑞普信生物技术有限公司第三方检测A549细胞。
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