泰州正规疾病动物模型建模

1、动物模型名称：泪腺摘除联合新洁尔灭致干眼兔模型2、实验动物种属：新西兰兔3、实验动物性别：雌雄不限4、实验动物年龄：2~3月龄5、实验动物体重：1.8~2.5kg6、实验动物环境：SPF级，1、实验方法：摘除泪腺联合新洁尔灭诱导。兔耳缘静脉注射戊巴比妥钠联合肌肉注射进速眠新Ⅱ进行麻醉。麻醉后，进行泪腺摘除手术，眼睑局部以75％酒精消毒，铺洞巾，于眼下眶周部做一切口，小心分离皮肤、肌肉、筋膜，寻找到泪腺后完整摘除之，然后缝合创口。术毕，滴妥布霉素**眼液2滴、涂四环素可的松眼药膏，共7d。术后兔创口愈合后进行给药造模。眼滴0.1%新洁尔灭溶液，2次/天，2滴/次，连续用药14d。2、检测标准：SchirmerI试验泪液分泌减少，1%虎红角膜染色试验虎红着色评分值高，角膜出现病理改变。验性动物模型是指研究者通过使用物理的、化学的和生物的致病因素作用于动物。泰州正规疾病动物模型建模

pirb在轴突生长锥表达，位于富含肌动蛋白的前缘和synapsin免疫阳性的囊泡中，在神经元突起的表达呈点状分布。文献表明，pirb表达随年龄增加，特别是在老龄认知损伤的小鼠海马中，pirb能够抑制轴突再生和突触可塑性。研究表明小鼠aβ寡聚体对海马长时程增强的破坏作用需要pirb的参与，在ad转基因模型中，pirb不仅参与成年小鼠记忆缺失，而且介导幼年小鼠视皮层突触可塑性的丢失。这些研究提示我们，pirb参与突触可塑性，抑制pirb可能对ad起到***效应。但是在cns，pirb的功能和下游抑制性信号通路仍然未被阐明，因此迫切需要pirb的细胞和动物模型。目前对于pirb基因功能的研究，多采用可溶性的pirb的胞外段(pirbextracellularpeptide，pep)和抑制剂，或者采用慢病毒转染。前者受到是否能够透过血脑屏障和抑制剂效率的影响，后者慢病毒转染在原代细胞和在体的转染效率比较低，使研究pirb的功能受到极大的限制。为解决这些问题，我们通过crispr/cas9技术建立了pirb基因敲入小鼠，将pirb基因敲入c57bl/6j的rosa26位点，为研究pirb在免疫系统或者神经系统的作用和机制提供了很好的工具。技术实现要素：本发明的目的在于提供pirb基因敲入的小鼠动物模型。南京视觉疾病动物模型建模人类疾病的动物模型是指各种医学科学研究中建立的具有人类疾病模拟表现的动物。

1、动物模型名称：D-半乳糖致老年痴呆大鼠模型2、实验动物种属：SD大鼠3、实验动物性别：雄性4、实验动物年龄：成年鼠5、实验动物体重：180g-220g6、实验动物环境：SPF级、实验方法：D-半乳糖诱导（大鼠按0.5g/kg体重腹腔注射D-半乳糖溶液）（注：每天1次，连续6-7周。）2、检测标准：①SOD明显下降、MDA明显增加；②水迷宫试验显示学习记忆能力下降；③脑组织神经元数目减少。1.提供动物模型构建过程中的原始实验记录及数据图片。

大鼠卵巢重量统计示意图。图6：动情周期检测(光镜下10倍)示意图，其中，a、b、c、d依次为：动情前期，动情期，动情后期，动情间期。图7：he染色观察不同方法造模对卵泡形态的影响(光镜下10倍)示意图，其中，a、b、c、d依次为：空白组，2mg组，4mg组，6mg组。具体实施方式下面结合实施例对本发明作进一步的说明。然而，本发明的范围并不限于下述实施例。本领域的专业人员能够理解，在不背离本发明的精神和范围的前提下。进一步地，压迫元件采用不受磁场干扰、置入体内不会对神经造成化学刺激以及具有一定可塑性的材料制备而成。上海东寰疾病动物模型建模。

1、动物模型名称：皮肤浅II°及深II°烫伤大鼠模型2、实验动物种属：SD大鼠3、实验动物性别：雌雄不限4、实验动物年龄：成年5、实验动物体重：160-200g6、实验动物环境：SPF级1、实验方法：热力致皮肤损伤法。麻醉大鼠，根据体重腹部备皮，然后固定于实验台上。将大鼠移近加热纯净水的烧杯，将纱布条浸入热水中，待水温恒定于99℃时，取出纱布，立即平铺于待烫部位，于纱布接触大鼠皮肤后开始计时。致伤3s为浅II°烫伤，致伤10s为深II°烫伤。2、检测标准：a.皮肤大体观察：致伤3s大鼠局部皮肤发红、轻微水肿。愈合后毛发生长良好，有少量红褐**素沉着，皮肤轻微挛缩，表皮光滑；致伤10s大鼠局部皮肤发白、水肿。愈合后毛发生长良好，皮肤瘢痕形成，表面粗糙不平。收集研究疾病的生物学信息资料。南京视觉疾病动物模型建模

动物模型作为人类疾病的缩影。泰州正规疾病动物模型建模

配制成6mg/kg顺铂注射液,按照10ml/kg分别在***天及第八天腹腔注射。实验建立大鼠卵巢早衰模型1.实验仪器及材料：如表1所示。表12.实验方法：①动物信息：sd大鼠，雌性，6-8周，体重180-220g。普通环境饲养，灭菌饲料饲养，自由饮水。②分组及给药剂量：如表2所示。表2③给药途径及频率：腹腔注射；2mg、3mg组连续注射7天；4mg、6mg组***天、第八天注射；对照组连续7天注射生理盐水。④病理检测：末次注射后15天，动物麻醉，采集血液，分离血清，elisa法测定血清中e2、fsh、lh水平变化情况。解剖动物，取卵巢组织称重，对大鼠的卵巢组织形态学进行观察。注射期间每天称重，给药后每周称重两次，每天进行阴道涂片检测动情周期。3.统计方法：采用graphpad进行统计分析。所有计量资料均采用均值±标准差表示采用单因素方差分析各组间均值的差异，p＜。4.试验结果：(3mg组注射完成后*存活一只，不进行统计)如表3、表4、图1、图2、图3所示：①***水平：与空白组相比，2mg组、4mg组、6mg组e2水平均降低，但是只有2mg组有明显降低(p＜)，如图1所示；与空白组相比，2mg组、4mg组、6mg组fsh水平均上升，只有2mg组有明显升高(p＜)，如图2所示；与空白组相比。泰州正规疾病动物模型建模

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