海南小鼠实验动物模型实验

时间:2024年08月04日 来源:

肝纤维化模型实验动物模型

1.诱导方法:1)成年雄性小鼠40%CCL4,皮下注射或灌胃5mL/kg。每三天/次,连续8周。成年雄性大鼠皮下注射60%CCl4(3ml/kg),每周2次,共9周。2)成年雄性大鼠1%二甲基亚硝胺DMN(10mg/kg),1次/d,2次/周,连续4周。3)成年雄性大鼠腹腔注射硫代乙酰胺(100mg/kg)隔日腹腔注射1次,连续13周。4)成年大鼠,灌胃给白酒7g/kg体重,每日晨1次,连续24周。

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5XFAD转基因实验动物模型。5XFAD小鼠在小鼠Thy1.2启动子的控制下过度表达人类APP和PSEN1蛋白,共有5个AD连锁突变,分别是APP中的瑞典(K670N/M671L)、佛罗里达(I716V)和伦敦(V717I)突变,以及PSEN1中的M146L和L286V突变。1.5个月大的5XFAD小鼠就开始出现Aβ沉积。5XFAD小鼠在大脑中积累的Aβ42多于Aβ40,这表明5个FAD突变累积影响Aβ42的产生。然而,在5XFAD小鼠中未观察到tau过度磷酸化和NFTs的形成。2个月大时出现星形胶质细胞增生和小胶质细胞增生,表明神经炎症发生在该模型早期。5XFAD小鼠再现了人类AD的病理学,类似于Tg2576、APP23和APPPS1模型。宁夏专业实验动物模型价格英瀚斯实验动物模型制作,提供造模方法、原始数据!

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研究人类老化的实验动物模型之快速老化模型。日本京都大学竹田俊男教授在1968年培育出快速老化小鼠(SAM),在此基础上又于1975年培育出易快速老化系小鼠(SAMP)和抗快速老化系小鼠(SAMR)。其中SAMP8小鼠在学习记忆减退、神经递质改变、APP代谢异常、Aβ沉积等方面表现出与年龄相关的AD临床特征,一致认为是研究AD比较好的动物模型。SAMP8小鼠的一般生存时间为10~12个月,在6个月龄之后进入老化加速期。在月龄相同情况下,SAMR1小鼠表现出抗痴呆特征,在实验研究中一般作为SAMP8鼠的对照。快速老化小鼠具有饲养周期短,衰老特征明显的优点,但快速老化小鼠相比其他模型小鼠价格较贵,且SAM动物繁殖能力较弱,相对来源较少,具有一定的局限性。

阿尔茨海默病实验动物模型。目前常用研究AD的实验动物有非人灵长类动物与啮齿类动物,在选择时遵循“减少、替代、优化”的3R原则。非人灵长类动物与人类的脑部解剖结构、神经病变特点以及生物行为模式相似,尤其是恒河猴,在其脑中观察到含有Aβ沉积的老年斑和神经原纤维缠结现象,无论是自发还是诱发模型,都能够较好的复制AD相关的病理及生理特征,但是昂贵的费用与稀少的资源限制了非人灵长类动物的大量应用。啮齿类动物虽然在病变模拟方面不如非人灵长类全方面的,但是具有价格低廉、资源范围很广的、生存率高等特点,与人类的脑部解剖结构与生理特征也较为相近,更适于诱导模型的大量制备,成为AD应用更范围很广的的动物模型。许多AD小鼠模型的背景品系是C57BL/6J小鼠,然而这种品系的小鼠似乎对类似AD的神经病理学具有特别的抵抗力。实验动物模型的造模方法?

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胃溃疡模型

造模方法

其中乙酸法组、假手术对照组因需要手术每组为20只(以免术后意外死亡使这些组别的样本减少),其余各组为16只。以造模前1日为第0日,造模当天为第1日。除正常对照组外,其余8组于第0日上午7:00同时开始禁食不禁水至第1日上午7:00,达24h。

具体如下:1)空白(正常)对照组:正常饮水、摄食。2)禁食对照组:正常饮水,继续禁食至晚19:00。3)水浸拘束组:早晨7:00开始,将各小鼠置于小鼠固定器中,限制活动,头朝上立于23℃左右的恒温水浴内,水面齐剑突,至晚19:00。4)乙酸组:早晨8:00,**吸入麻醉小鼠,无菌手术开腹,暴露胃,在胃前壁浆膜面窦体交接处同一部位(避开血管),用浸有冰醋酸,边长为5mm的正方形滤纸接触2次,每次30秒,然后还纳胃体,逐层缝合切口。5)假手术对照组:方法同乙酸法组,滤纸浸生理盐水。乙酸及假手术组交替进行,早11:00前手术结束。6)磷酸组织胺组:上午11:00,灌胃8mg/ml磷酸组胺溶液0.8mg/10g。7)***痛组:下午13:00,皮下注射5mg/ml***痛NaHCO3溶液0.3mg/10g。8)利血平组:下午13:00,皮下注射1mg/ml利血平注射液0.1mg/10g。9)乙醇组:下午18:00,灌胃无水乙醇0.1ml/10g。 实验动物模型在哪买?宁夏专业实验动物模型价格

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肾小管坏死小鼠模型

【操作步骤】BALB/c小鼠,放置在每升空气中含有5mg的氯仿的环境中,持续3h后,可引起不同程度的肾坏死。

【结果分析】出生46~106d的雄性小鼠发生率可高达90%以上。持续在氯仿气雾中24h,动物肾脏组织学观察,肾***损害且肾小管明显坏死。


急性肾小管坏死大鼠模型

【操作步骤】SD或Wistar大鼠,体重190~250g,实验前置于代谢笼中饲养,记录食物、饮水和尿量。实验时由尾静脉注射**1.0mg/kg。24h后出现急性肾小管坏死表型。

【结果分析】尾静脉注射**24h后,尿量明显减少,尿渗透浓度降低,且出现细胞学的改变,近曲小管的末端部分可见肾坏死灶。


4-硝基儿茶酚等制剂引起的肾坏死模型

【操作步骤】成年雄性SD或Wistar大鼠,实验前置于代谢笼中饲养,测12h的尿量和尿中的酸性磷酸酶、碱性磷酸酶、乳酸脱氢酶、谷氨酰脱氢酶的正常排泄水平。可选用下列不同药品给大鼠进行腹腔注射,造模。(1)硝酸钠:2.5mg/(ml·100g);(2)4-硝基儿茶酚:1mg/(ml·100g);(3)4-硝基茶胂酸;2.5mg/(ml·100g);(4)4-氨基儿茶酚:1.5mg/(ml·100g)。用药后12h测定尿量和尿酶量。

【结果分析】肾中毒的大鼠尿量普遍减少。肾组织表现***损害和肾小管明显坏死。 海南小鼠实验动物模型实验

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