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    室温培育30min后加入细胞孔板中，置于培养箱常规培养。2)单克隆细胞筛选转染24h后胰酶消化细胞并按1∶6比例接种到新6孔板中，同时加入实验确定的浓度G418，随后每2d更换一次培养基并维持G418筛选直至单细胞抗性克隆的出现。分别挑选单一抗性克隆至96孔板，待其逐渐增殖后转入24孔板中继续传代培养。3)荧光素酶活性鉴定阳性克隆单一抗性克隆传代至第五代时用LuciferaseAs-sayAystem检测荧光素酶活性。检测时，各克隆按1×105个/孔接种到24孔板，24h后细胞裂解液裂解12000rpm，4℃离心10min，收集裂解物，取上清10μl加入96孔白板中，向每孔加入50μl荧光素酶96microplateluminometer连续读底物，停留2s后，取10s的荧光值（RLU），每个克隆设3个复孔，保留RLU值高的细胞克隆继续传代培养，再过5代后进行荧光素酶活性检测。保留RLU值维持较高的克隆直至第30代，荧光素酶活性更高的几个克隆MCF-7-luc即为阳性克隆.各不同数量细胞克隆的荧光值检测7-luc阳性克隆细胞按细胞数将筛出的MCF-4×104、2×104、1×104、5000、2500、1250、625、312和156分别接种到96孔黑板中，另外一组只有细胞，一组只有培养基作对照，设置2个复孔，常规培去上清并用PBS洗两次。做D-荧光素钾盐的哪家便宜。南通荧光素酶编码基因D-荧光素钾盐保质期

    并实现了在非常高通量的应用中使用报告基因检测。[1]随着UltraGlo™萤光素酶的发展，现在已经实现了“加样-读数”的ATP检测方法。ATP是细胞健康的重要指标，这使得CellTiter-Glo®能有效测定细胞活力，尤其是在高通量应用中。该检测原理还促进了其它ATP检测平台的诞生，尤其是用于研究ATP酶（如激酶）的Kinase-Glo®（2004年）和ADP-Glo™（2009年）酶检测系统。[1]2003Caspase-Glo®3/7检测除了可以利用萤火虫萤光素酶反应测定样品中萤光素酶或ATP的含量外，还可以检测底物（luciferin）浓度的变化。通过将luciferin与可被不同酶类识别并产生反应的保护基团偶联，能对这些酶进行灵敏的“加样-读数”检测，如半胱天冬酶（caspase）和其它蛋白酶。[1]2007One-Glo™萤光素酶检测系统随着对萤火虫萤光素酶化学反应的进一步了解以及Promega生物学家和化学家团队的建立，一种改进的luciferin面世，能更好地用于典型的报告基因检测应用。这种新的底物——fluoroluciferin，是新型底物开发的一个早期实例。[1]2012NanoLuc®萤光素酶基于定向进化和新型底物开发方面的经验，研究人员从虾的萤光素酶改造设计出一种新型萤光素酶报告基因，即NanoLuc®萤光素酶。泰州专业做D-荧光素钾盐生物公司D-荧光素钾盐应立即使用，或分装于-20℃避光保存，避免反复冻融。

    luciferin)的分子结构如右图所示：，在氧气、ATP存在的条件下和荧光素酶发生反应，生成氧化荧光素(oxyluciferin)，分子结构如右图所示，并产生长发生光现象。但是该底物荧光素以前大多依赖进口，产品价格昂贵。而且由于该产品容易降解、受潮影响使用效果。所以，需要国产化的方式生产，一方面可以降低成本，一方面可以增强使用效果。作者：科远迪链接：zhuanlan./p/来源：知乎著作权归作者所有。商业转载请联系作者获得授权，非商业转载请注明出处。D-luciferin，potassiumsalt荧光素产品说明书发光原理哺乳动物生物发光，一般是将Fireflyluciferase基因（由554个氨基酸构成，约50KD）即荧光素酶基因整合到预期观察的细胞染色体DNA上以表达荧光素酶，培养出能稳定表达荧光素酶的细胞株，当细胞分裂、转移、分化时,荧光素酶也会得到持续稳定的表达。基因、细胞和活题动物都可被荧光素酶基因标记。将标记好的细胞接种到实验动物体内后，当外源（腹腔或静脉注射）给予其底物荧光素(D-luciferin，potassiumsalt，以下均简称荧光素)，即可在几分钟内产生长发生光现象。所发的光波长在540-600nm。这种酶在ATP，氧存在的条件下，催化荧光素的氧化反应才可以发光。

    这是一种小分子（19kDa）单体酶，具有独特的底物，其灵敏度比已具备高灵敏度的萤火虫或海肾萤光素酶系统高约100倍。这种新型的报告基因有着***的应用前景，为进一步的技术开发奠定了基础。[1]2015NanoBRET™技术NanoLuc®的小体积和非常明亮的光输出是作为蛋白质标签的理想特征。这些特征还很适合作为生物发光共振能量转移（BRET）的供体。一项针对各种能量受体荧光基团的深入研究发现，红色光谱中的可选择性有助于消除与BRET测定相关的一些挑战。可将这些荧光基团添加到蛋白质配基等分子中以测量靶蛋白的结合，或与HaloTag®配基耦联以进行活细胞中蛋白质：蛋白质相互作用的检测。[1]2016NanoBiT®技术随着NanoLuc®的诞生，Promega的科学家努力将该报告基因改造为多亚基系统，即“NanoLuc®BinaryTechnology”或NanoBiT®。该系统由两部分组成：11个氨基酸的小标签和一个更大，更精细的NanoLuc®亚基，LgBiT。这两部分结构互补结合，重组为一个明亮的萤光素酶。这些亚基的亲和力可以和SmBiT肽一样低，从而可以进行蛋白质相互作用的测定；也可以和HiBiT一样高，从而允许自我组装。[1]2017HiBiT®技术基于NanoBiT®系统的研究。D-荧光素钾盐的配置是什么？

    我们将与LgBiT具有极强亲和作用的。HiBiT作为一种易于检测且具有高灵敏度的蛋白质标签，具有多种功能，例如当与基于CRIPSR的标签一起使用时，可以创建内源性报告基因模型。[1]2020Lumit™技术随着NanoBiT®技术的发展，人们认识到可以利用该系统通过结合免疫测定的组分检测多种分析物。由此产生的平台（现称为“Lumit”）提供了具有高灵敏度的简化免疫检测法。萤光素酶（英语：Luciferase）是自然界中能够产生生物发光的酶的统称，其中**有代表性的是一种学名为Photinuspyralis的萤火虫体内的萤光素酶。在相应化学反应中，荧光的产生是来自于萤光素的氧化，有些情况下反应体系中也包括三磷酸腺苷（ATP）。没有萤光素酶的情况下，萤光素与氧气反应的速率非常慢，而钙离子的存在常常可以进一步加速反应（与肌肉收缩的情况相似）。萤光生成反应通常分为以下两步：萤光素+ATP→萤光素化腺苷酸（luciferyladenylate）+PPi萤光素化腺苷酸+O2→氧萤光素+AMP+光这一反应非常节省能量，几乎所有输入反应的能量都被转化为光。与之形成鲜明对比的是人类使用的白炽灯，只有约10%的能量被转化为光，剩余的能量都变为热能而被浪费。萤光素或萤光素酶不是特定的分子。D-荧光素钾盐的发射波长是多少？苏州体外研究D-荧光素钾盐供应商

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    随后30年里，Promega不断在萤光素酶实验工具领域推陈出新，保持技术带跑的人的地位。这里提到的萤光素酶即荧光素酶。1991萤光素酶检测系统（LAR）Promega公司推出的7b0a8f9c-3a4b-41a1-a7f8-3萤光素酶检测试剂LuciferaseAssaySystem（LAR），为灵敏、非放射性的报告基因检测拉开了序幕。LAR与萤火虫萤光素酶（luc）报告基因一起，为研究人员开始了解基因表达调控因子提供了首要的工具。1995Dual-Luciferase®报告基因检测系统（DLR）DLR是7b0a8f9c-3a4b-41a1-a7f8-3允许在单个样本中依次检测两个报告基因的试剂。通过允许萤光素酶活性的内部归一化，在提高报告基因检测的可靠性方面取得了关键进展。此外，pGL3报告基因载体系列具有改良后的萤火虫萤光素酶基因，luc+。这个改造一种报告基因以实现性能改进的例子后来被进一步应用到pGL4和luc2报告基因上，通过生物信息学和合成方法，实现了更大的改进。[1]1999ENLITEN®/UltraGlo™重组萤光素酶Promega公司在早期推出的一种重组萤火虫萤光素酶（Enliten）基础上，改造出了一种称为UltraGlo™的热稳定性萤光素酶。UltraGlo™的开发是在各种检测和储藏条件下进行一步法“加样-读数”检测的关键。此后。南通荧光素酶编码基因D-荧光素钾盐保质期

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